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GST融合蛋白純化磁珠 技術(shù)問答
  • 發(fā)布日期:2018-05-22      瀏覽次數(shù):4376
    • GST融合蛋白純化篇
      1.如何純化GST融合蛋白?

      2.可純化蛋白種類


      3.磁珠掛不上目的蛋白
      以下的處理方案的前提是樣本里面有目的蛋白,如果是包涵體需要變性。
      可能一:結(jié)合條件不對
      理想的結(jié)合條件為pH 6.5-8.0,純化之前確認(rèn)磁珠是否采用緩沖液平衡以及蛋白樣本的pH值,低于pH6.5或高于pH8時(shí),融合蛋白與磁珠結(jié)合不充分導(dǎo)致結(jié)合效率低。
      可能二:樣本中目的蛋白的濃度偏低
      目的蛋白的濃度過低,會嚴(yán)重影響磁珠與蛋白的結(jié)合。
      兩種方法可供選擇:
      a)濃縮蛋白樣本;b)增加磁珠的濃度
      可能三:檢查目的蛋白是否聚集沉淀
      在細(xì)胞裂解前加入DTT,在緩沖液中也加入DTT 。1-20mM的DTT 會顯著增加某些GST融合蛋白的結(jié)合。
      可能四:判斷是否是因?yàn)镚ST失活
      過度超聲會破壞標(biāo)簽蛋白而減少其與磁珠的結(jié)合。減少超聲破碎的時(shí)間和強(qiáng)度。
      可能五:標(biāo)簽蛋白可能改變了GST 構(gòu)相
      降低結(jié)合的溫度來改善結(jié)果。

      4.目的蛋白在磁珠上,洗脫不下來
      *步:判斷是否結(jié)合
      取Mag beads加loading buffe煮沸,再跑page電泳。
      如果確認(rèn)有蛋白,且載量還很高,那么極有可能是形成了過蛋白沉積。
      太多的蛋白沉積在磁珠孔內(nèi),無法洗脫。建議將目的蛋白樣本稀釋,少量純化。
      第二步:調(diào)節(jié)洗脫條件
      洗脫緩沖液pH,酸性的都洗不下蛋白。盡量將洗脫液的pH值調(diào)到8.0。

      5.洗脫樣本里面有雜蛋白
      可能一:非特異性吸附
      提高平衡緩沖液中的鹽濃度可以降低因?yàn)殡x子作用帶來的非特異吸附。
      在平衡緩沖液中添加0.5%吐溫或Triton可以避免因?yàn)槭杷嗷プ饔脤?dǎo)致非特異吸附,這些措施都可以電泳的雜帶明顯減少。
      可能二:26KD的GST條帶
      GST融合蛋白的表達(dá)系統(tǒng)很容易表達(dá)到GST部分就終止,所以26KD左右的雜帶是很常見的,那可以選擇用不同濃度的還原谷胱甘肽去做階段洗脫,如果還是分不開,那也許就得選擇離子交換或者凝膠過濾等別的分離手段。
      可能三:蛋白降解
      如果用上述方法還是雜帶多,那就地回頭去看看破碎的條件是不是太劇烈或者溫度控制不好導(dǎo)致蛋白短裂或者分解導(dǎo)致一些蛋白片段帶標(biāo)簽,或者因?yàn)闃悠烽L時(shí)間保存導(dǎo)致水解等
      可能四:蛋白相互作用
      蛋白相互作用形成聚合體,導(dǎo)致雜帶增加,而由于疏水相互作用或者因?yàn)殡x子作用可以通過添加表面活性劑或者增加離子強(qiáng)度得到改善,對于因?yàn)樾纬删酆象w的可以在緩沖液和樣品中加1-2mM巰基乙醇避免。

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