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細胞培養(yǎng)常見問題解答
  • 發(fā)布日期:2018-01-02      瀏覽次數(shù):2214
    • 1.如何選用特殊細胞系培養(yǎng)基? 

      培養(yǎng)某一類型細胞沒有固定的培養(yǎng)條件。在MEM中培養(yǎng)的細胞,很可能在DMEM或M199中同樣很容易生長。總之,MEM做粘附細胞培養(yǎng)、RPMI-1640做懸浮細胞培養(yǎng)是一個好的開始。 

       

      2.何時須更換培養(yǎng)基? 

      視細胞生長密度而定, 或遵照細胞株基本數(shù)據(jù)上之更換時間,按時更換培養(yǎng)基即可

       

      3.可否使用與原先培養(yǎng)條件不同之培養(yǎng)基? 

      不能。每一細胞株均有其特定使用且已適應(yīng)之細胞培養(yǎng)基, 若驟然使用和原先提供之培養(yǎng)條件不同之培養(yǎng)基, 細胞大都無法立即適應(yīng), 造成細胞無法存活。 

       

      4.可否使用與原先培養(yǎng)條件不同之血清種類? 

      不能。血清是細胞培養(yǎng)上一個極為重要的營養(yǎng)來源,所以血清的種類和品質(zhì)對于細胞的生長會產(chǎn)生極大的影響。來自不同物種的血清, 在一些物質(zhì)或分子的量或內(nèi)容物上都有所不同,血清使用錯誤常會造成細胞無法存活。 

       

      5.何謂FBS, FCS, CS, HS ? 

      FBS (fetal bovine serum) 和FCS (fetal calf serum) 是相同的意思, 兩者都是指胎牛血清, FCS 乃錯誤的使用字眼, 請不要再使用。CS (calf serum) 則是指小牛血清。HS (horseserum) 則是指馬血清。 

       

      6.培養(yǎng)細胞時應(yīng)使用5% 或10% CO2?或根本沒有影響? 

      一般培養(yǎng)基中大都使用HCO3-/CO3 2-/H+ 作為pH 的緩沖系統(tǒng), 而培養(yǎng)基中NaHCO3 的含量將決定細胞培養(yǎng)時應(yīng)使用的CO2 濃度。當培養(yǎng)基中NaHCO3 含量為每公升3.7 g 時,細胞培養(yǎng)時應(yīng)使用10% CO2;當培養(yǎng)基中NaHCO3 為每公升1.5 g 時, 則應(yīng)使用5% CO2 培養(yǎng)細胞。

       

      7.Hank's 平衡鹽溶液(HBS)要在空氣中使用,不需要CO2培養(yǎng)箱。原因是什么

      Hank's 平衡鹽溶液(HBS)和Earle's平衡鹽溶液(EBS)有什么本質(zhì)的功能差別? 
      HBS和 EBS 的主要差別在于碳酸氫鈉的水平,在Eagles (2.2 g/L)中比在Hanks (0.35 g/L) 中高。碳酸氫鈉需用高水平的CO2平衡,以維持溶液的PH值。Eagles液在空氣水平的CO2 中,溶液會變堿,Hanks液在CO2培養(yǎng)箱中會變酸。如果希望在CO2培養(yǎng)箱中保存組織,需要用Eagles液,。如果僅僅是清洗將要在細胞培養(yǎng)基中儲存的組織,用Hanks液就可以了。  

       

      8.細胞之接種密度為何? 

      依照細胞株基本數(shù)據(jù)上之接種密度或稀釋分盤之比例接種即可。細胞數(shù)太少或稀釋的太多亦是造成細胞無法生長之一重要原因。

       

      9.懸浮性細胞應(yīng)如何繼代處理? 

      一般僅需持續(xù)加入新鮮培養(yǎng)基于原培養(yǎng)角瓶中, 稀釋細胞濃度即可, 若培養(yǎng)液太多時,可將培養(yǎng)角瓶口端稍微抬高, 直到無法容納為止。分瓶時取出一部份含細胞之培養(yǎng)液至另一新的培養(yǎng)角瓶, 加入新鮮培養(yǎng)基稀釋至適當濃度, 重復(fù)前述步驟即可

       

      10.冷凍管應(yīng)如何解凍? 

      取出冷凍管后, 須立即放入37℃水槽中快速解凍, 輕搖冷凍管使其在1 分鐘內(nèi)全部融化, 并注意水面不可超過冷凍管蓋沿, 否則易發(fā)生污染情形。另冷凍管由液氮桶中取出解凍時, 必須注意安全, 預(yù)防冷凍管之爆裂。  

       

      11.細胞冷凍管解凍培養(yǎng)時, 是否應(yīng)馬上去除DMSO? 

      除少數(shù)特別注明對DMSO 敏感之細胞外, 絕大部分細胞株(包括懸浮性細胞), 在解凍之后, 應(yīng)直接放入含有10-15 ml新鮮培養(yǎng)基之培養(yǎng)角瓶中, 待隔天再置換新鮮培養(yǎng)基以去除DMSO 即可, 如此可避免大部分解凍后細胞無法生長或貼附之問題。

       

      12.附著性細胞繼代時所使用之trypsin-EDTA 濃度?應(yīng)如何處理? 

      一般使用之trypsin-EDTA 濃度為0.05% trypsin-0.53 mM EDTA Na4。*次開瓶后應(yīng)立即少量分裝于無菌試管中, 保存于-20 ℃,避免反復(fù)冷凍解凍造成trypsin 之活性降低, 并可減少污染之機會。  

       

      13.欲將一般動物細胞離心下來,其離心速率應(yīng)為多少轉(zhuǎn)速? 

      欲回收動物細胞, 其離心速率一般為300xg (約1 000 rpm),5-10 分鐘, 過高之轉(zhuǎn)速, 將造成細胞死亡。  

       

      14.細胞冷凍培養(yǎng)基之成份為何? 

      動物細胞冷凍保存時zui常使用的冷凍培養(yǎng)基是含5-10% DMSO (dimethyl sulfoxide) 和90-95% 原來細胞生長用之新鮮培養(yǎng)基均勻混合之。注意:由于DMSO 稀釋時會放出大量熱能, 故不可將DMSO 直接加入細胞液中, 必須使用前先行配制完成。  

       

      15. DMSO 之等級和無菌過濾之方式為何? 

      冷凍保存使用之DMSO 等級, 必須為Tissue culture grade之DMSO (如Sigma D2650), 其本身即為無菌狀況, *次開瓶后應(yīng)立即少量分裝于無菌試管中, 保存于4℃, 避免反復(fù)冷凍解凍造成DMSO 之裂解而釋出有害物質(zhì), 并可減少污染之機會。若要過濾DMSO, 則須使用耐DMSO 之Nylon 材質(zhì)濾膜。  

       

      16.冷凍保存細胞之方法? 

      冷凍保存方法一: 冷凍管置于4℃30~60 分鐘→ (-20℃ 30 分鐘*) → -80℃16~18 小時(或隔夜) → 液氮槽vaporphase 長期儲存。 
      冷凍保存方法二: 冷凍管置于已設(shè)定程序之可程序降溫機中每分鐘降1-3 ℃至-80℃以下, 再放入液氮槽vapor phase長期儲存。*-20℃不可超過1 小時, 以防止冰晶過大,造成細胞大量死亡,亦可跳過此步驟直接放入-80℃冰箱中,惟存活率稍微 降低一些。  

       

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